細胞的凍存與復蘇

一、   程序凍存步驟（需梯度降溫）

1、 配置凍存液，凍存液推薦配比：55%（基礎培養基）+40%(血清)+5%（DMSO）或90%胎牛血清+10%DMSO；推薦使用Procell通用血清型程序凍存液，貨號PB180436；

2、 制備好的細胞懸液計數，計算總細胞量；

3、 細胞離心后盡量吸干凈上清，離心轉速1200rpm（250g）3min；

4、 加入配置好的凍存液重懸，調整細胞濃度為3×10⁶~1×10⁷cells/mL；

5、 分裝入凍存管，一個凍存管分裝1~1.5毫升；

6、 推薦使用程序降溫盒，分裝好的凍存管轉入程序降溫盒后直接放入-80℃冰箱過夜；

7、 如沒有程序降溫盒，則按下列順序依次降溫：室溫→4℃ 20min→-20℃ 30min→-80℃過夜→液氮保存，注意轉移過程中要保冷，避免產生溫差或凍存管融化；

8、 從-80℃冰箱取出凍存管迅速轉移到液氮長期保存。

注意事項：

1、 DMSO配制的時候會放熱，一定要等凍存液冷卻后使用，避免灼傷細胞；

2、 細胞離心后盡量吸干凈上清液，減少培養基殘留，避免稀釋凍存液；

3、 不建議手動梯度降溫，溫度不穩定，容易降低存活率；

4、 注意程序降溫盒內異丙醇的量必須高于最-低刻度線；凍存5次后異丙醇需要更換一次，以免影響凍存效果；程序降溫盒需恢復到室溫以后才能繼續使用，不能從冰箱拿出來直接使用；

5、 細胞懸液加入凍存液以后盡量短時間的在常溫放置，DMSO常溫下對細胞損傷大，分裝完成后立即轉入程序降溫盒放到-80度冰箱，不需要放4度；

6、 -80度凍存過夜后可以轉入液氮長期保存，轉入液氮的過程需要對凍存盒進行保冷，不要長時間在常溫暴露，避免凍存管融化；

7、 若沒有液氮罐，存放在-80度的時候一定要放靠里面的位置，避免開關冰箱導致溫度不穩定。

8、 細胞凍存后應取出一管復蘇，檢測細胞的存活率。理論上細胞可在液氮內長期保存，為穩妥起見可在細胞凍存半年后復蘇培養，觀察細胞生長情況，再繼續凍存；

二、   非程序凍存步驟（需使用無血清凍存液）

1、  凍存液叢冰箱提前拿出回溫到室溫，推薦Procell無血清非程序凍存液，貨號PB180438；

2、  制備好的細胞懸液計數，計算總細胞量；

3、  細胞離心后盡量吸干凈上清，離心轉速1200rpm（250g）3min；

4、  加入無血清非程序凍存液（PB180438）重懸，調整細胞濃度為3×10⁶~1×10⁷cells/mL；

5、  分裝入凍存管，一個凍存管分裝1~1.5毫升；

6、  分裝好的凍存管直接轉入-80度冰箱過夜，不需要程序降溫盒；

7、  轉入液氮途中需將凍存管做好保冷措施，避免直接暴露于常溫，快速轉入液氮罐進行長期保存；

注意事項：

1、 由于沒有使用凍存盒，在轉入液氮的過程中一定要對凍存管做好保冷措施，不能直接用手拿，可以用干冰或者少量液氮保護后轉移，操作過程注意安全；

2、 轉移過程要快，避免凍存管暴露于常溫后融化；

3、 若沒有液氮罐，存放在-80度冰箱的時候一定要放靠里面的位置，避免開關冰箱導致溫度不穩定；

三、   細胞復蘇步驟

1、  將水浴鍋預熱至37℃，準備好干凈的一次性PE手套，一個無菌離心管內加入9ml無菌培養基；

2、  將細胞從液氮罐中取出放入PE手套中，迅速沒入水浴鍋，搖晃凍存管加速溶解，以1分鐘內全部溶解為宜；

3、  在超凈臺中將復蘇好的細胞液加入到裝有新鮮培養基的離心管內，1200rpm/min 離心3分鐘，離心完畢去掉上清；

4、  用適量與細胞對映的*培養基重懸細胞，接入到無菌容器中（培養瓶或培養皿），補充培養基到適宜，放入培養箱培養；

注意事項：

1、 水浴鍋的位置如果與液氮罐不是一個房間，需要對凍存管進行保冷后轉移到水浴鍋旁，避免路途細胞表面融化；

2、 細胞溶解過程快速搖晃以加速溶解；

3、 已溶解的凍存細胞盡量短時間的在常溫存放，盡快離心去除DMSO；

4、 貼壁細胞復蘇24小時后觀察，若密度達到80%，則正常傳代；若密度不到80%則繼續培養到48小時再換液；

5、 懸浮細胞復蘇3天內不建議離心換液；

6、 對DMSO不敏感的細胞在復蘇時也可不離心，減少操作步驟，也可降低污染的幾率。將解凍的細胞懸液直接轉移至T25細胞瓶內，補加新鮮培養基，放入溫箱內培養。但培養12~24h后必須換新鮮的培養基，移除死細胞。